Avaliação
de implantes de osso bovino liofilizado "Osseobond"®
e membrana reabsorvível de osso
bovino liofilizado
Leonardo
DE LA VALLE RESTREPO **
Clóvis
MARZOLA ***
Alberto CONSOLARO ****
Alessandro A. COSTA PEREIRA *****
João Lopes TOLEDO FILHO ******
Jesus Carlos ANDREO *******
SINOPSE
Na presente pesquisa avaliou-se microscopicamente o
potencial do Osseobond (matriz óssea bovina desmineralizada) + membrana reabsorvível
do osso bovino (Dentoflex) no reparo de defeitos ósseos provocados em tíbias
de ratos "Wistar albinus". Um total de 40 defeitos ósseos de
aproximadamente 3 mm de diâmetro foram produzidos com broca de fissura 701 nas
tíbias direita e esquerda dos animais. Em cada animal um defeito foi
preenchido com partículas de Osseobond mescladas corp aglutinante "Dentoflex"
e, recoberto com membrana reabsorvível de osso bovino liofilizado "Dentoflex".
A outra falha foi preenchida com coágulo sanguíneo do próprio animal. Os animais
foram sacrificados após 3, 7, 10, 20 e 40 dias. As peças descalcificadas foram
processadas e cortes histológicos foram obtidos. A analise histológica indicou
que no grupo controle e experimental aos 7 dias, foram encontradas áreas iniciais
de neo-formação óssea na periferia das lojas cirúrgicas com grande quantidade
de osteoblastos e tecido osteóide. Nos grupos controle de 10,20 e 40 dias o
padrão de neo-formação óssea manteve-se uniforme, culminando com o preenchimento
da loja cirúrgica já a partir do período de 20 dias. No grupo experimental de
20 dias a formação óssea teve seu início junto à cortical oposta, da periferia
para o centro preenchendo parcialmente a loja cirúrgica. No grupo experimental
de 40 dias as lojas cirúrgicas encontravam-se praticamente reparadas com tecido
ósseo pouco trabeculado, com a formação óssea preenchendo a loja cirúrgica,
contudo, não ultrapassado seu limite externo.
ABSTRACT
This work was made to evalue the histologic potential
of Osseobond (desmineralized bovine bone matrix) + bovine bone resorbable membrane
(Dentoflex). Used for bone defect, that were made in tibias of "Wistaralbinus"
mouse, 40 bone defect were made from 3 mm diameter with drill number 701
in left and right tibias of mouse. In each animal one defect was filled with
lyofilized osseobond particles mixed with agglutinate "Dentoflex"
and recovered with Iyofilized bovine bone resorbable membrane. The another bone
defect was filled with they own blood chot. The animaIs were killed after 3,
7, 10, 20 and 40 days. Descalcified pieces were processed and histologic pieces
were obtained. Histologic analysis show control group and experimental group
of 7 days had initial new formation bone areas around surgical place with a
lot of osteoblastos and osteoid tissue. Control group shows at 10, 20 and 40
days a bone new formation pattern around a surgical place was uniform, finishing
with a surgical place partially filled since 20 days. Experimental group's bone
formation began at the same time with a opposite cortical bone, from outside
to inside of surgical place partially filled a surgical place. Experimental
group at 40 days
shows a surgical place practically filled with bone tissue with a little of
wrought bone. The bone formation filled a surgical place without outdate an
extern limit.
UNITERMOS
Osso bovino liofilizado, Membranas, Reparo ósseo, RTG.
UNITERMS
Lyofilized bovine bone, Membranes, Bone repair, GTR.
INTRODUÇÃO
É preocupação do cirurgião dentista a perda óssea
ocorrida logo após a extração de dentes, assim como a formação de tecido fibroso
onde deveria existir tecido ósseo, limitando a grande maioria dos casos clínicos
à perfeita adaptação de próteses futuramente, vindo a restringir a função estomatológica
do paciente e impedindo sua recuperação estética. Por isto desde algum tempo
pesquisas estão evoluindo no sentido de possibilitar a colocação de materiais
no interior de cavidades ósseas após exodontias, exéreses de cistos, apicoplastias
ou ainda de outras patologias onde possa vir a ocorrer uma loja óssea após o
procedimento cirúrgico.
Estas cavidades em condições normais, desde que o agente
causador tenha sido eliminado, são reparadas através de processo de reparo biológico
natural. A extensão e velocidade deste processo de reparação, está na dependência
da localização anatômica do agente etiológico, das dimensões da lesão,
além das características biológicas de cada indivíduo. Podem ser necessários
anos para se completar um reparo, expondo-se o paciente a riscos e desconfortos,
muitas vezes desnecessários (19, 20) .
Na tentativa de reconstrução total ou parcial dessas estruturas
perdidas, desenvolveram-se técnicas com o objetivo de recuperar o contorno anatômico
normal, restaurar sua função, eliminar espaços mortos, favorecer a cicatrização,
além de prevenir a invaginação de tecidos moles para o interior dessas cavidades,
reduzindo assim as chances de infeções secundárias e, restabelecendo consequentemente,
de maneira quase imediata o suporte para aparelhos protéticos (18, 19, 20) .
Materiais implantares em cavidades ósseas como o gesso
paris, osso sintético e osso anorgânico, foram utilizados com resultados relativamente
apreciáveis (09,17,19,20) .A idéia de ser usado osso desmineralizado em defeitos
ósseos não é nova e, já em 1889 SENN (29) relatava o uso desse material para
tratamento de falhas ósseas ocasionadas por osteomielites. Uma alternativa viável
no tratamento de lesões ósseas crânio- bucofaciais vem sendo a utilização de
matriz óssea alogênica desmineralizada submetida a procedimentos especiais de
reparo, para o preenchimento do espaço das lesões, na expectativa de formação
de novo osso na região (19, 20, 21) .
O comprometimento do reparo ósseo ocorre pela união
fibrosa no defeito ósseo, pela invasão de fibroblastos no coágulo sanguíneo
(22). Para que isto seja evitado, pode-se lançar mão de uma técnica cirúrgica
que impeça que o coágulo sanguíneo, ou a loja óssea, sejam populados por células
indesejáveis, pela colocação de membranas ou barreiras físicas (05, 07, 16,
19, 20), favorecendo assim a migração de células com potencial osteogênico (19,
25) .Assim, impede-se que os fibroblastos colonizem o coágulo antes dos osteoblastos,
que são mais lentos em sua função (22) .
A utilização de membranas biológicas impede que as céluIas
do epitélio bucal e do tecido conjuntivo participem da cicatrização do defeito
ósseo, deixando que as células osteoblásticas tenham a prioridade de
se conduzirem para a área. Estas membranas criam um meio propício para melhorar
a regeneração funcional através do potencial biológico natural que inclui
fatores como a prevenção da inflamação consequente à presença bacteriana, a
estabilidade mecânica do coágulo, a criação e manutenção do espaço pôr ele preenchido
além do isolamento dos tecidos indesejáveis do local de regeneração (16, 19)
.
As membranas atuam como uma barreira física, facilitando
o processo de regeneração. Atualmente, as membranas se dividem em dois grandes
grupos, as não reabsorvíveis e as reabsorvíveis, que podem ser subdivididas
em bioabsorvíveis, onde é degradada por simples hidrólise e, em biodegradáveis,
onde há uma ação enzimática (16) .São várias as desvantagens das membranas não
reabsorvíveis, como a necessidade de um segundo procedimento cirúrgico para
sua remoção, pela ausência de incorporação ao tecido hospedeiro, além da tendência
à infecção pós operatória e recessão gengival (07) .
O tratamento de lesões ósseas com matriz óssea
liofilizada humana em partículas, é uma alternativa de tratamento utilizada
até hoje, principalmente na área odontológica. No entanto, devido ao
seu alto custo e à dificuldade de obtenção de osso humano viável em quantidade,
associado à proibição em vários países da comercialização de produtos de órgãos
ou tecidos humanos, foram lançados no mercado produtos originados de osso bovino,
com as mesmas finalidades (32) .Pela possibilidade de transmissão de doenças
e o risco de reações imunológicas, a ciência busca materiais que substituam
o osso perdido, ou ainda técnicas que venham a possibilitar a formação do osso
a partir de um substrato ósseo preexistente (como o uso de membranas),
ou ainda de substâncias que induzam a formação óssea (04) .
Quando há grande falta de osso, técnicas de enxertos ósseos
autógenos podem ser utilizadas, mas apesar de suas enormes vantagens
biológicas, apresentam certos inconvenientes, como a necessidade de hospitalização,
intervenção em outra área do organismo, morbidade da área doadora, maior convalescença,
susceptibilidade à infeções e ainda, a possibilidade de reabsorção progressiva
e constante da área (03,13, 27) .
A regeneração tecidual guiada (RTG) através de membranas
biológicas tem mostrado considerável sucesso em cranioplastias (11) ,
na restauração de parede lateral de seio maxilar (05) , no aumento de rebordo
alveolar (15, 19) , vindo a facilitar o trabalho do protesista (19, 20) .A RTG
pode ser distinguida como uma conduta que, utilizando princípios biológicos,
proporciona condições para a superação de determinados obstáculos, além da correção
de problemas anteriormente sem possibilidades de solução (09) .
No reparo de pequenos defeitos ósseos, cortical ou medular,
inicialmente deposita-se osso primário na primeira semana que posteriormente
é substituído por osso lamelar na quarta semana; nas falhas corticais de até
0,2 mm ocorre uma deposição direta de osso lamelar (28) .Estudo realizado em
cães demostrou que o osso formado através do auxílio da RTG responde favoravelmente
à implantação de cargas oclusais, tal qual o osso normal (08) .A membrana Gengiflex,
além de permitir a regeneração do tecido ósseo, evita a presença de células
oriundas do periósteo, verificado em estudo experimental realizado em coelhos
(06) .
Pesquisa foi efetuada sendo avaliado histologicamente
o potencial do Osseobond no reparo de defeitos ósseos perenes provocados em
crânios de cobaios encontrando que todas as falhas ósseos preenchidas somente
com coágulo sanguíneo estavam totalmente abertas contendo tecido conjuntivo
fibroso; nas falhas ósseas preenchidos com Osseobond as partículas foram reabsorvidas
em quase sua totalidade já após 3 meses, e aos 6 meses o espaço da lesão estava
totalmente ocupado por tecido ósseo em estado avançado de organização (32) .
Foi demostrado que defeitos ósseos com 5 mm de diâmetro provocados
em mandíbulas de ratos que eram cobertos por membranas de politetrafluoretileno
expandido (e-PTFE) eram totalmente regenerados com novo osso após 4 semanas,
enquanto que nos lugares sem a membrana eram constantemente invadidos por tecido
conjuntivo (12).
Pesquisando em macacos, foram criadas falhas bilaterais nas
mandíbulas desses animais com dimensões de 10 x 8 mm e 16 x 8 mm. Em tais defeitos
foram colocadas membranas de e-PTFE (microporos entre 15-25 mm) reforçadas com
tela de polipropileno. Duas das seis regiões infectaram entre 2 e 4 semanas,
sendo que as outras permaneceram até o final do estudo (1 ano), mostrando regeneração
de 90% do defeito (14).
Estudo controlado em cães com uma membrana de osso liofilizado
com manutenção do espaço sob a membrana feita através de colunas de osso cortical
liofilizado mostrou ser tão eficiente quanto o uso de membranas de e-PTFE com
espaço mantido pelas mesmas colunas de osso cortical. Os resultados foram obtidos
após 3 meses de cicatrização e, os grupos que utilizaram membranas, de qualquer
tipo, tiveram preenchimento total de osso (30).
Pesquisa efetuada em cães mostrou que aos 3 meses o
osso liofilizado bovino havia levado à formação de osso em defeitos ósseos periodontais,
entretanto questionava-se quanto à eficiência desse osso frente à desafios bacterianos
recorrentes. Observaram que quando isso ocorria não havia diferença entre o
grupo que usou osso liofilizado e o grupo controle (31) .
Numa pesquisa com câmaras coletoras de osso colocadas
em tíbias de coelhos, foi demonstrado que o osso liofilizado formou 65% menos
osso que o grupo controle, ou seja, o osso liofilizado não acelerava a formação
óssea em condições favoráveis (01) .
Foi testada a biocompatibilidade de implantes de Hapset®
(Hidroxiapatita associada ao Sulfato de Cálcio) em feridas de extração dental
pela inserção de tubos de polietileno em alvéolos de ratos após extrações, contendo
em suas extremidades Hapset e Gutapercha, concluindo que o Hapset mostrou-se
irritante aos tecidos, promovendo atraso na reparação alveolar (23).
O osso liofilizado desmineralizado (DFDBA) e o osso
liofilizado não desmineralizado (FDBA), foram testados clinicamente, sendo que
o segundo material em 6 meses já havia reparado 66% da falha, enquanto que o
primeiro havia reparado 59%, o que estatisticamente pode ser considerado como
não sendo diferente (25) . Na tentativa de formar osso em fraturas de cães com
osso liofilizado, ocorreram falhas, indicando, contudo, que o DFDBA tenha potencial
osteoindutor suficiente (02, 33) .
Dois casos clínicos de levantamento da mucosa
de seio maxilar, associados com a colocação posterior de implantes foram realizados,
um com DFDBA e outro com osso autógeno de crista iIíaca, foram relatados, sendo
que biópsias foram obtidas aos 16 meses no caso com DFDBA e, aos 8 meses no
caso com osso autógeno. O osso autógeno formou osso de alta qualidade e os 8
implantes colocados encontravam-se osteointegrados na época da segunda cirurgia.
O osso liofilizado além de formar osso em menor quantidade, mostrou também ser
de má qualidade (24) .
Considerando-se as cirurgias periapicais,
apicoplastias, exérese de cistos, intervenções nos tecidos do periodonto, e
levando-se em conta os conceitos biológicos da Regeneração Tecidual Guiada (RTG),
propusemo-nos a realizar uma análise experimental da utilização de membrana
biológica de osso bovino recobrindo cavidades ósseas preenchidas com matriz
de osso bovino liofilizado (OSSEOBOND), sendo ambos materiais fabricados pelo
Departamento de Bioquímica da FOB-USP .
MATERIAL E MÉTODOS
Foram utilizados 20 ratos machos "Wistar
albinus " adultos pesando aproximadamente 250 g provenientes do biotério
da FOB-USP. Foram divididos em 5 grupos de 4 animais cada, de acordo com os
períodos experimentais de 3, 7, 10, 20 e 40 dias. As cirurgias foram realizadas
com os animais sob anestesia por inalação com éter sulfúrico.
Após anestesia e preparado o campo cirúrgico
foi efetuada tricotomia das regiões ventral direita e esquerda das superfícies
laterais das tíbias com lâmina de barbear e assepsia vigorosa com iodo tópico.
Foram incisadas com lâmina de bisturi número 15, a pele e a fascia muscular
em seu sentido longitudinal, com aproximadamente 1,5 cm de extensão, para expor-se
a superfície anterior do osso. Em seguida outra incisão foi praticada sobre
o periósteo para permitir seu descolamento, sendo afastado no sentido posterior,
obtendo-se assim, excelente área de trabalho (Fig.1). Duas pinças foram colocadas
para a manutenção e proteção das estruturas moles (Fig.1), uma em cada extremidade
óssea realizando-se as cavidades na tíbia, com o auxilio de uma broca de fissura
número 701 em turbina de alta rotação. Estas cavidades foram preparadas nas
superfícies laterais das tíbias direita e esquerda, com aproximadamente 3 mm
de extensão longitudinal, e 2 mm de extensão transversal; somente às expensas
da cortical óssea lateral e espaço medular das tíbias, sem qualquer envolvimento
cortical medial (Fig.1). Assim tornou-se possível a inclusão de materiais implantares,
sem exceder o volume da cavidade.
Foi implantado na cavidade feita na tíbia
direita o osso bovino liofilizado da marca Osseobond* que trata-se de
uma matriz orgânica de osso cortical bovino na forma microgranulada, obtida
por desmineralização cuidadosa e controlada da cortical óssea, finamente pulverizado,
misturado com aglutinante Dentoflex* que é um polissacarídeo constituido
por glicose com solução tampão com pH fisiológico, cujo componente principal
é a Dextrana; e, recobrindo esses materiais, foi colocada uma membrana reabsorvível
de osso bovino Dentoflex* produzida a partir da laminação da cortical
óssea bovina desmineralizada e liofilizada, umedecida em soro fisiológico
a 0.9%, sendo chamada esta de "tíbia experimental" (Fig. 2 e 3). Na
tíbia esquerda. não foi colocado nenhum material, sendo chamada de "tíbia
controle". Logo após ser colocado o material implantar foi estimulado o
sangramento da região, sendo reposicionados os tecidos sobre o local, promovendo-se
a sutura num só plano, com pontos simples interrompidos com fio de seda preta
4-0 (Ethicon -Johnson & Johnson) (Fig.4).
Terminadas as suturas os ratos foram
colocados em gaiolas plásticas com pó de serragem onde permaneceram até o dia
do sacrifício, sendo este pó de serragem trocado a cada dois dias. Os animais
foram alimentados com rações de alimentos especial Purina® e água
corrente em quantidades não especificadas, sendo a água trocada todos os dias.
Não foi feita nenhuma medicação analgésica, antinflamatória
ou antibiótica no pós operatório imediato ou tardio.
Os 5 grupos foram sacrificados conforme as datas pré-estabelecidas
para cada grupo em 3,7, 10,20 e 40 dias após a cirurgia, pela intoxicação com
éter sulfúrico. Quando do sacrifício, a porção das tíbias contendo a cavidade
simples e com material, foi removida, preservando-se o periósteo. Estas porções
das tíbias foram removidas usando-se discos de carborundo montados em alta rotação,
com irrigação abundante com soro fisiológico à 0.9%.
As peças foram fixadas em formalina à 10% e descalcificadas
em ácido diaminotricloroacético por 30 a 40 dias, desidratadas e incluídas em
parafina para posteriores cortes histológicos de 6 a 8 mm semiseriados de 1
:5. Estes cortes foram corados por hematoxilina e eosina, sendo as lâminas confeccionadas
e analisadas sob microscopia óptica.

Fig. 1 -Aspecto
do preparo da cavidade para o recebimento do material aloplástico implantar
Fig. 2- O material implantar "Osseobond" colocado na cavidade.
Fig. 3- O material implantar "Osseobond" colocado na cavidade
e protegido pela membrana Dentoflex.

Fig. 4 -Aspecto da sutura final no experimento realizado.
Fig. 5- Fotomicrografia experimenlal com 3 dias:
Fig. 6- Fotomicrografia controle com 3 dias:

Fig. 7-
Fotomicrografia experimental com 7 dias: Áreas de neoformação óssea
(ON) à partir da periferia, remodelação da cortical óssea (c), com intensa
atividade celular na região, neovascularização (*) e presença de células
inflamatórias (®) -Aumento original de 48x.
Fig. 8-
Fotomicrografia controle com 7 dias: No fundo da loja cirúrgica tem-se
neoformação óssea (ON). com presença de células osteoblásticas (U) e neovascularização
(*) -Aumento original de 100x.
Figo 9- Fotomicrografia experimental
com 10 dias: Da periferia para o centro da loja cirúrgica observa-se neoformação
óssea (ON), presença de células osteoblásticas (U), remodelação da cortical
óssea (c), neovascularização (*) e presença de células inflamatórias (®)
-Aumento original de 48x.

Fig.l0- Fotomicrografia controle com 10 dias:
No meio da loja cirúrgica nota-se neoformação óssea (ON) com presença de células
osteoblásticas (U), remodelação da cortical óssea (c) e, neovascularização (.).
Aumento original de 48x.
Fig. 11 -Fotomicrografia
experimental com 20 dias,: Do fundo para a periferia da loja cirúrgica
nota-se neoformação óssea (ON), com presença de células osteoblásticas (U) e
formação de tecido osteóide (TO). Remodelação da cortical óssea (c) e indício
de células que formarão a medula óssea (MO) -Aumento original de 48x.
Fig.l2 -Fotomicrografia controle com 20
dias: No fundo da ferida cirúrgica observa-se neoformação óssea (ON), focos
hemorragicos (H), com presença de células que formarão a medula óssea (MO) -
Aumento original de 48x.

Fig. 13 -Fotomicrografia
experimental com 40 dias: Vista panorâmica da loja cirúrgica com fechamento
da ferida (ON) e remodelamento das corticais ósseas (c). Presença de medula
óssea (MO), com maior quantidade de células amarelas (CA) em relação às vermelhas
(CV) -Aumento original de 16x.
Fig. 14 -Fotomicrografia
controle com 40 dias: Preenchimento ósseo (ON) da cavidade cirúrgica,
com formação de medula óssea (MO), com presença de maior quantidade de células
vermelhas (CV) em relação às amarelas (CA) -Aumento original de 48x.
RESULTADOS
Grupo experimental de 03 dias:
Nas lâminas deste grupo observam-se fragmentos de tíbia
óssea, com tecido medular interposto por corticais ósseas revestidas parcialmente
pelo periósteo. A medula óssea, à distância da loja cirúrgica, mostra padrões
de normalidade e hematopoiese. As corticais exibem poucos e estreitos espaços
medulares, bem como pequeno número de osteócitos, que estão ausentes
na faixa da cortical junto à loja cirúrgica. Em uma das corticais ósseas pode-se
notar a loja cirúrgica de forma ovalada, alcançando levemente a cortical oposta,
e no interior desta loja observam-se fragmentos de tecido amorfo acelular e
eosinófilo, compatível com tecido ósseo desvitalizado. De permeio a esses fragmentos
teciduais notam-se grandes quantidades de vasos sanguíneos congestos, hiperêmicos
e dilatados, além de focos hemorrágicos e infiltrado inflamatório contendo células
mono e polimorfonucleares. Há discretas unidades de reabsorção óssea instaladas
junto à loja cirúrgica, tanto no osso cortical, quanto junto nos fragmentos
teciduais. Recobrindo a loja cirúrgica nota-se rico exsudado serofibrinoso,
com infiltrado inflamatório predominantemente polimorfonuclear além de áreas
hemorrágicas. No interior da medula óssea e próximo à loja cirúrgica observam-se,
em pequeno número, células gigantes multinucleadas, além de células inflamatórias
PMNs e, grande número de vasos sanguíneos (ig. 5).
Grupo experimental de 7 dias:
Neste grupo experimental os fragmentos de tíbia mostram,
junto à cortical óssea seccionada, áreas de neo-formação óssea, iniciando na
periferia da cortical, com um contorno arredondado, acompanhando a loja cirúrgica
e unindo-se, ao centro, à neo-formação óssea iniciada na outra cortical. A neo-formação
óssea preenche parcialmente a loja cirúrgica na sua periferia e profundamente.
Este tecido ósseo neoformado, do tipo imaturo, mostra-se bem celularizado, com
muitos osteócitos e revestimento externo por osteoblastos, possuindo arranjo
trabecular . No interior da loja cirúrgica notam-se fragmentos de tecido amorfo,
acelular, lembrando tecido ósseo desvitalizado, com focos de reabsorção e presença
de clastos multinucleados, em lacunas e justapostos à superfície. Externamente,
aloja cirúrgica mostra-se com infiltrado inflamatório MN e presença de CGMls,
vasos sanguíneos congestos e hiperêmicos, além de uma área inicial de neo-formação
óssea. Nas paredes da cortical voltadas para a loja cirúrgica nota-se franca
reabsorção óssea, com a instalação de várias unidades de reabsorção. Na cortical
oposta observa-se formação de osso subperiostal e, no mesmo nível da loja cirúrgica
nota-se formação de tecido cartilaginoso. Não há presença de periósteo. O espaço
medular mostra-se preenchido com medula de padrão normal (Fig. 7).
Grupo experimental de 10 dias:
Os fragmentos de tíbias dos animais
deste grupo experimental mostram neo-formação óssea ocupando grande extensão
do canal medular, iniciando-se à distância da loja cirúrgica. O osso neoformado
mostra-se ricamente celularizado, com grande quantidade de osteócitos e de espaços
medulares, caracterizando formação trabecular, com revestimento por osteoblastos
dispostos organizadamente em paliçada e, presença de clastos mononucleados,
predominantemente justapostos e à distância. De permeio notam-se numerosos vasos
sanguíneos. Próximo à loja cirúrgica, circundada por infiltrado inflamatório,
caracteristicamente MN, há numerosas células lembrando fibroblastos e no interior
da loja cirúrgica observam-se fragmentos de tecido amorfo, acelular e eosinófilo,
lembrando tecido ósseo desvitalizado, com superfície irregular e, sem revestimento
celular externo. Não são notados clastos adjacentes a esta área, nem focos de
reabsorção de tais fragmentos. De permeio aos fragmentos teciduais observa-se
infiltrado inflamatório MN e PMN, áreas hemorrágicas e, exsudado fibrinoso.
Recobrindo externamente a loja cirúrgica há tecido conjuntivo com infiltrado
inflamatório MN, fibroblastos, pobre formação de fibras colágenas, vasos sanguineos
em pequeno número e ausência de CGMI. A cortical óssea oposta à loja cirúrgica
apresenta formação óssea subperiostal em toda a sua extensão, enquanto que na
cortical onde existe a loja cirúrgica esta formação é parcial, contendo pequena
área com formação cartilaginosa. À distância a medula óssea exibe padrões de
normalidade (Fig. 9).
Grupo experimental de 20 dias:
Neste grupo experimental observa-se nos
fragmentos da tíbia, formação óssea trabecular , com espaços medulares amplos
e celularizados, com osteócitos e revestido por osteoblastos. A formação
óssea inicia-se junto à cortical oposta e da periferia para o centro preenche
parcialmente a loja cirúrgica. Na superfície da loja cirúrgica notam-se pequenos
e poucos fragmentos amorfos acelulares e eosinófilos, lembrando osso desvitalizado
e, de permeio há infiltrado inflamatório MN, encontrando-se também alguns clastos
multinucleados e CGMI. Recobrindo a loja cirúrgica nota-se tecido conjuntivo
fibroso e células inflamatórias MN. Extensa formação de tecido fibroso, celularizado,
ocupa a periferia da loja cirúrgica, interpondo-se entre esta e o tecido ósseo
neoformado. As paredes das corticais ósseas voltadas para a loja cirúrgica mostram-se
recortadas e revestidas por osteoblastos, além da presença de linhas de reversão.
O canal medular mantém-se preservado à distância da loja cirúrgica e com padrão
de normalidade. Parcialmente as corticais mostram, externamente, periósteo e
inserção de tecido muscular (Fig. 11).
Grupo experimental de 40 dias:
Nota-se neste grupo experimental, tíbias
com lojas cirúrgicas praticamente reparadas com tecido ósseo pouco trabeculado,
com arranjo parecido aos das corticais, com canal medular total ou parcialmente
restabelecido. O limite entre as paredes remanescentes das corticais e do osso
neoformado é nítido. A formação óssea preenche a loja cirúrgica não ultrapassando
seu limite externo. Não se observa infiltrado inflamatório e fragmentos
de material amorfo e acelularizado. A medula óssea apresenta aspectos
de normalidade, inclusive próximo ao espaço ocupado anteriormente pela
loja cirúrgica (Fig. 13).
Grupo controle:
Os cortes microscópicos das tíbias dos animais
dos grupos controle mostram padrões de normalidade relativos à neo-formação
óssea, observando-se no período de 3 dias a formação de coágulo sanguíneo
além de restos de tecido ósseo amorfo e desvitalizado em toda a loja
cirúrgica (Fig. 6). Neste período constatou-se intenso infiltrado inflamatório,
predominantemente mononuclear, com presença de clastos multinucleados junto
aos fragmentos de tecido ósseo. A partir do período de 7 dias nota-se
áreas iniciais de neo-formação óssea na periferia das lojas cirúrgicas,
com presença de grande quantidade de osteoblastos e produção de tecido osteóide
(Fig. 8). Nos grupos de 10 (Fig. 10),20 (Fig. 12) e 40 dias (Fig. 14), o padrão
de neo-formação óssea mantém-se uniforme, mudando-se apenas a quantidade
de sua formação, culminando com o preenchimento da loja cirúrgica já a partir
do período de 20 dias. O espaço mostra-se com aspecto de normalidade compatíveis
com a remodelação óssea, exibindo reparação ao final do período
experimental.
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AUTORES
|
MATERIAL
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LOCAL
|
MÉTODO
|
RESULTADOS
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SONIS
et al 1985
|
Osso
liofilizado bovino
|
Defeitos
Periodontais em cães
|
Histológico
|
Formação
de osso nas falhas periodontais após 3 meses
|
|
ASPENBERG
et al 1988
|
Osso
liofilizado + câmaras coletoras de osso
|
Tíbias
de coelhos
|
Histológico
|
Demonstram
que o osso liofilizado formou 65% menos que o grupo controle
|
|
DAHLIN
et al 1988
|
Membrana
de politetrafluoretileno expandido (e-PTFE)
|
Mandíbula
de ratos
|
Histológico
|
Regeneração
total da falha com novo osso em 4 semanas
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RUMMERLHART
et al 1989
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Osso
liofilizado desmineralizado (DFDBA) e, osso liofilizado não desmineralizado
(FDBA)
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-
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Clínico
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O
DFDBA em 6 meses reparou 66% da falha óssea e, o GDBA reparou 59%
do defeito ósseo
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FRITZ
et al 1994
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Membrana
de politetrafluoretineno expandido + tela de polipropileno
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Mandíbula
de macacos
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Histológico
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Após
1 ano, regeneração óssea de 90% da falha.
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NARY
FILHO; OKAMOTO 1996
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Hapset
- Hidroxiapatita + Sulfato de Ca.
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Alvéolo
de ratos
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Microscópio
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Irritante
aos tecidos além de provocar um atraso no reparo alveolar
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NISHIBORI
et al 1994
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Osso
liofilizado desmineralizado. Osso autógeno de crista ilíaca
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Levantamento
de seio maxilar
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Clínico
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Osso
liofilizado formou osso em menor quantidade e, de má qualidade,
enquanto que o osso autógeno formou osso de alta qualidade
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SMUKLER
et al 1995
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Membrana
de osso liofilizado + osso cortical liofilizado
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Cães
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Histológico
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Preenchimento
total da falha óssea após 3 meses.
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MARZOLA
et al 1996
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Osseobond
+ Biohapatita + Aglutinógeno + Membrana Dentoflex
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Humanos
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Clínico
e radiográfico
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Após
mais de 2 anos de acompanhamento de mais de 20 casos, nota-se clínica
e radiograficamente a perfeita formação óssea.
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BELTRÃO;
LORANDI 1997
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Membrana
Gengiflex
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Coelhos
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Histológico
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As
membranas excluem as células oriundas do periósteo, permitindo
regeneração do tecido ósseo a partir do coágulo,
endósteo e fatores de crescimento.
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TAGA
et al 1997
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Osseobond
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Crânios
de cobaias
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Histológico
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Aos
6 meses o espaço da lesão estava totalmente ocupado por
tecido ósseo em estado avançado de organização.
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DE
LAVALLE et al 1997
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Osso
liofilizado bovino + Membrana de osso bovino liofilizado + Aglutinógeno
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Tíbias
de ratos
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Microscópico
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Aos
40 dias nota-se tíbias com lojas cirúrgicas praticamente
reparadas com tecido ósseo pouco trabeculado e, medula óssea
com aspecto de normalidade.
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DISCUSSÃO
É de extrema importância esta linha de pesquisa sobre
os materiais aloplásticos implantares, constituindo-se seu emprego em mais um
recurso a ser aplicado principalmente na clínica cirúrgica especializada, para
o preenchimento de falhas ósseas, buscando-se desta maneira, um reparo mais
adequado a esta área, tendo em vista principalmente a colocação de implantes,
num curto espaço de tempo.
Nos resultados obtidos na presente investigação por
implantes de osso liofilizado + aglutinógeno + membrana de osso bovino liofilizado,
pôde-se constatar através da análise microscópica que após 40 dias as
lojas cirúrgicas encontravam-se praticamente reparadas, com tecido ósseo pouco
trabeculado e, medula óssea com aspectos de normalidade.
Estes achados podem ser perfeitamente comparados àqueles
encontrados por outros autores, que além de constatarem esta ocorrência microscopicamente,
ainda verificaram estes mesmos achados clínica e radiograficamente (12, 14,
19, 20, 25, 30, 32) , demonstrando-se assim, as propriedades destes materiais
no reparo de uma loja cirúrgica, bem como sua capacidade osteoindutora, além
de mostrarem-se totalmente biocompatíveis (01, 12, 19, 20, 32) (Quadro I).
Durante a técnica cirúrgica observou-se que estes materiais
do mesmo modo que em outros experimentos, apresentavam características de fácil
manipulação (19,20,32) , podendo desta maneira serem facilmente trabalhados
para sua colocação nas feridas cirúrgicas.(Quadro I).
Nesta pesquisa pôde-se verificar que estes materiais
aloplásticos, tanto o osso liofilizado quanto a membrana, foram quase que perfeitamente
reabsorvíveis após um período de 40 dias, não sendo necessário, principalmente
para as membranas, a necessidade de um segundo tempo cirúrgico (07, 16) , tornando-os
assim, muito mais acessíveis aos profissionais da área, no que diz respeito
à conscientização de seus pacientes para seu recebimento, evitando-se assim
outro tempo cirúrgico para a remoção da membrana, no caso das não reabsorvíveis,
apesar do reparo adequado (06) .
Foram encontradas outras pesquisas onde foram obtidos
resultados que diferem daqueles observados nesta investigação (01,02,23,24,33)
, podendo-se atribuir este fato à tentativa de alguns autores em descobrir novas
aplicações e subsídios desses materiais aloplásticos implantares (02, 23, 33).
Em outra investigação, estudo comparativo foi efetuado entre osso autógeno e
osso liofilizado, para o levantamento de mucosa de seio maxilar (24) concluindo-se
pela melhor qualidade do osso autógeno utilizado, conclusão parecendo-nos óbvia,
tendo em vista o material utilizado -osso da própria pessoa - apesar do maior
desgaste a que deva ser submetido este paciente, para a retirada desse osso
(Quadro I), além do altíssimo custo da cirurgia, que tornaria o processo praticamente
restrito a determinadas classes sociais. Este é o principal fator em que se
baseia o estudo dos presentes materiais, para tornar seu custo bastante acessível,
tanto para os profissionais quanto para os clientes menos favorecidos.
CONCLUSÕES
Do exposto parece lícito concluir que:
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*Estes três materiais são desenvolvidos no Departamento de Bioquímica
da FOB-USP.
* Trabalho realizado com o
apoio do CNPq: Processos n° 50.0067-92-9,40.0464-95 e 52.0415/94-9, e como parte
dos créditos da Disciplina de Metodologia de Ensino e Pesquisa do Curso de Especialização
de Longa Duração em Cirurgia e Traumatologia BucoMaxiloFacial da FOB-USP.
** Aluno concluinte do Curso de Especialização de Longa Duração em Cirurgia
e Traumatologia BucoMaxiloFacial da FOB-USP.
*** Professor Titular de Cirurgia da Faculdade de Odontologia de Bauru da USP.
Membro Titular Praticante do Colégio Brasileiro
de Cirurgia e Traumatologia BMF e Ex. Presidente. Especialista em Cirurgia
e Traumatologia Buco Maxilo Facial. Professor dos Cursos de Pós-Oraduação -Mestrado,
Doutorado e Especialização -em Cirurgia e Traumatologia BucoMaxiloFacial das
Faculdades de Odontologia da PUCRS de Porto Alegre, da UFPE em Recife e da Faculdade
de Odontologia de Pernambuco em Recife. Professor "HONORIS CAUSA"
da UNIORANRIO. Membro da Academia "Pierre Fauchard" e Vice-Presidente
da Seção do Brasil. "Life Fellow" da International Association of
Oral and Maxillofacial Surgeons. Fellow do International College of Dentistry
.Membro do Oruppo Italiano di Studi Implantari de Bologna -Itália. Membro Honorário
do International Research Committee of Oral Implantology. Membro Honorário da
Academia Mineira de Odontologia. Coordenador do Curso de Especialização em CTBMF
da FUNBEO da FOB-USP. Membro do Corpo Clínico do Hospital de Base da Associação
Hospitalar de Bauru e, do Hospital Benef1Ciência Portuguesa de Bauru. Prêmio"
Antonio de Souza Cunha" do Colégio Brasileiro de Cirurgia e Traumatologia
BMF pela melhor contribuição à literatura especializada, pela quarta vez.
**** Professor Titular de Patologia da Faculdade de Odontologia de Bauru da
USP. Coordenador do Curso de Pós-Oraduação (Mestrado e Doutorado) em Patologia
da FOB-USP.
***** Professor da Disciplina de Patologia da Faculdade de Odontologia de Três
Corações -MO. Mestre pela Faculdade de Odontologia de Bauru da USP. Doutorando
em Patologia pela FOB-USP.
****** Professor Associado de Anatomia da Faculdade de Odontologia de Bauru
da USP. Especialista em Cirurgia e Traumatologia Buco Maxilo Facial. Chefe do
Serviço de Cirurgia Buco Maxilo Facial do Hospital de Base da Associação Hospitalar
de
Bauru. Membro Titular Praticante do Colégio Brasileiro de Cirurgia e Traumatologia
BMF. Membro da Academia "Pierre Fauchard". Coordenador do Curso de
Especialização em CTBMF da A.P.C.D. de Bauru.
******* Professor Doutor de Anatomia da Faculdade de Odontologia de Bauru da
USP.